Fiche de BS0705

Liste des parcours dans lesquels apparaît l'EC

Mention / Parcours / Parcours type	ECTS	Points
Biologie-Santé / Microenvironnement cellulaire et pathologies / MCP	6	60
Biologie-Santé / Ingénierie Biologique et Applications Thérapeutiques / IBAT	6	60

Équipe pédagogique
- Responsables
- ETIQUE Nicolas (Responsable) Département : Biologie-Biochimie (UFR SEN)

Volume horaire
Nature CM TD TP Total

Durée 21h 9h 15h 45h

Nature	CM	TD	TP	Total
Durée	21h	9h	15h	45h

Modalités de contrôle des connaissances (MCC)

Epreuves		Nature	Oral	Oral	CRTP	EET	EET	Total
Epreuves		Durée	0h10	0h10		2h	2h	Total
Points(%)	Cas général	1ère session	10	10	30	50		100%
	Cas général	2nd session			30		70	100%
	Dispense contrôle continu	1ère session			30	70		100%
	Dispense contrôle continu	2nd session			30		70	100%

Objectifs
Présenter à l’étudiant la diversité des modèles in vitro couramment utilisés en recherche mais aussi leurs applications, leurs avantages et leurs limites.
Compétences spécifiques visées
Connaitre les avantages/limites des principaux modèles in vitro. Savoir choisir un modèle in vitro adapté à l'analyse d'un processus physiologique mais aussi de façon plus générale à un projet de recherche. Savoir adapter/améliorer un modèle in vitro pour une problématique donnée.
Compétences générales visées
Maitriser les techniques de culture cellulaire. Savoir présenter à l'oral des résultats expérimentaux.

Connaissances requises
Savoir travailler sous un Poste de Sécurité Microbiologique de type II. Connaitre les notions de bases de la culture in vitro de cellules animales (supports, coating, milieux…)

Programme
Cours magistraux :
La culture in vitro
1. Présentation générale UE
2. Intérêts et limites des Modèles in vitro
3. Les différents types de culture in vitro (Présentation générale)
4. Rappel sur Equipements, supports de cultures et « coating », Milieux de culture et suppléments

Culture d’organe et d’explants
1. Caractéristiques de la culture d’organes
2. Applications
3. Techniques et procédures
4. Exemples de cultures d’organes embryonnaires entiers et de tissus

Culture primaire
1. Explants primaires
2. Techniques de dissociation mécaniques et enzymatiques
3. Exemples et applications

Cellules souches / Modèles de différentiation hématopoïétiques
1. Les cellules souches : Définition, caractéristiques
2. Culture primaire des cellules souches hématopoïétiques (CSH)
- Objectifs
- Obtention des cellules souches hématopoïétiques (CSH)
- Conditions de culture in vitro des CSH
- Méthodes d’expansion des CSH
- Méthodes d’évaluation fonctionnelle des CSH
- Méthodes de Différenciation des CSH
3. Cultures primaires de cellules issues d'embryons
-Les MEF (Mouse Embryonic Fibroblasts)
-Utilisations des MEFs
-Protocole d’isolement et culture des MEFs

Les lignées cellulaires
1. Lignées cellulaires finies et continues
2. Processus d’immortalisation
3. Processus de transformation
4. Caractérisation des lignées cellulaires
5. Conservation des lignées cellulaires
5. Problèmes et avantages

Modèles d’étude de la Migration, de l’invasion et de l’angiogenèse
Introduction
a. Migration/invasion
b. Modèles d’étude de la migration cellulaire
c. Modèles d’étude de l’invasion cellulaire
2. Méthodes d’étude de la migration cellulaire
3. Méthodes d’étude de l’invasion cellulaire
4. Angiogenèse
a. Généralité sur l’angiogenèse
b. Méthode d’étude in vitro

Les tissus reconstruits : exemple de la peau,
1. Les tissus reconstruits et tissue engineering : définition. Exemples de la cornée (semi-reconstruite) et focus
sur la peau (reconstruction totale)
2. La peau : épiderme, jonction dermo-épidermique, derme et hypoderme. Marqueurs de différenciation
3. Modèles in vitro 2D et 3D. Comparaison avec la peau humaine
4. Les explants cutanés
5. Avantages et inconvénients des différents modèles
6. Sensibilisation Au Bioprinting

Travaux dirigés :
Culture de lignée cellulaires in vitro
Travail de recherche bibliographique à présenter sous forme d’exposé oral. Les thèmes sont liés à la culture in vitro : Congélation de cellules, contamination à mycoplasmes, Niveau de sécurité des salles de culture…

Cultures primaires et modèles d’études de processus biologiques
Travail de recherche bibliographique à présenter sous forme d’exposé oral. Les thèmes sont liés à la culture de cellules primaires, aux modèles d’études de processus biologiques et aux tissus reconstruits.

Travaux pratiques :

Mise en place d’une culture organotypique : La peau reconstruite
1. Mise en culture d’un modèle de peau à base de fibroblastes primaires humains et de kératinocytes
2. Préparation de lames histologiques et coloration
3. Analyse des coupes histologiques
4. Rédaction d’un article scientifique et vidéo type JOVE

BS0705 - De la cellule à l'organe : les modèles in vitro

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Équipe pédagogique

Responsables

Volume horaire

Modalités de contrôle des connaissances (MCC)

Objectifs

Compétences spécifiques visées

Compétences générales visées

Connaissances requises

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